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医学实验手册:动物给药
发布时间:2020-04-28 18:27 文章来源:未知 作者:百替生物
医学实验手册
普略医学(百替生物)成立于2011年,是国内较早成立的转化医学研究技术服务公司。公司拥有八大转化医学研究技术平台,数十个技术实验室全部按国家或国际一流标准建设,仪器配置齐全。普略医学根据多年实验经验推出医学实验手册,助力基础医学科研!上期我们讲了动物的捉拿与固定,这一期我们来看看动物给药~~
灌胃给药
操作要点与注意事项:
(一)将动物固定成垂直体位,使其头、颈、身体成一条直线;
(二)灌胃前将动物禁食,以免动物灌胃后呕吐;
(三)灌胃针不可插入过深,一般插入小鼠3~4cm,大鼠4~6cm后即可注入药物;
(四)常用灌胃量:小鼠0.2~1ml,大鼠1~4ml,豚鼠1~5ml。
注射给药
皮下注射(H/SC)
剃去注射部位毛发并用酒精消毒,左手将皮肤提起,右手持注射器刺入皮下,针头轻轻左右摆动,易摆动说明已刺入皮下,然后缓慢地将药物注入皮下。推药过程中能明显观察到注射部位逐渐肿胀,注射完拔出针头后用无菌棉签压住进针部位片刻以免药物外漏。注射剂量大鼠一般小于1ml/100g,小鼠一般为0.1~0.3ml/10g。
皮内注射(id)
将药液注入皮肤的表皮和真皮之间,用于观察皮肤血管的通透性变化或皮内反应,接种、过敏实验等一般作皮内注射。先将注射部位毛发剃去,局部常规消毒,左手拇指和食指按住皮肤使之绷紧,在两指之间进行针头穿刺,针头进入皮肤浅层,再向上挑起并稍刺入,将药液注入皮内,注射部位呈现小丘疹状隆起,且皮肤上的毛孔极为明显。如果注射时感觉比较费力,说明注射正确;如果感觉比较容易,说明已注入皮下,要拔出针头重新注射。注射剂量大鼠一般小于0.1ml/次,小鼠一般小于0.05ml/次。
肌肉注射(im)
肌肉注射一般在动物麻醉后进行,或者由两个人操作,一人固定动物,另一人执行注射。一般注射部位为大腿后侧肌肉。酒精消毒注射部位后,左手抓住后肢,右手持针插入肌肉,试着回抽针筒,如有血液或液体回流,表示不适当,需重新插入。确定针头插入肌肉后,慢慢将药剂推入,推入的速度应避免太快,以免组织损伤。大鼠注射量一般为0.1~0.5ml/100g,小鼠注射剂量一般为0.1~0.3ml/10g。
腹腔注射(ip)
以左手抓取并固定住动物,使腹部向上,右手将注射针头于下腹部刺入皮下,以45度角穿过腹肌,固定针头,缓缓注入药液。
操作要点与注意事项:
(一)针头刺破腹肌后会有落空感,此时针头已进入腹腔,应停止进针以免针头刺入过深损伤内脏。
(二)为避免伤及内脏,应使动物处于头低位,使内脏移向上腹。
静脉注射(iv)
鼠尾静脉注射:鼠尾静脉有三根,左右两侧及背侧各一根。操作时先将动物固定在鼠筒内或扣在烧杯中,使尾巴露出,尾部用45~50℃的温水浸润半分钟或用酒精擦拭使血管扩张,并使表皮角质软化,用左手拇指、食指和无名指捏住并从下面托起尾巴,用无名指和小指夹住尾巴的末梢,右手持注射器使针头与静脉平行(小于30°),从尾下四分之一处(约距尾尖2~3厘米)处进针,此处皮薄易于刺入,先缓注少量药液,如无阻力,表示针头已进入静脉,可继续注入。
脑内注射
成年大小鼠颅骨较硬,注射前需进行颅脑开窗手术,常使用脑定位注射仪进行注射;幼鼠可用盲刺法进行注射,左手固定乳鼠俯卧于垫布上,酒精消毒注射部位,右手持注射器垂直刺入硬脑膜下,进针2~3mm,注入药液,注射完毕酒精消毒局部。